Содержание
Грунтовки PLITONIT АкваГрунт — Plitonit.ru
Клеи для плитки
PLITONIT PLITOFLEX 2500
PLITONIT В, усиленный армирующими волокнами
PLITONIT В+
PLITONIT С
PLITONIT Clinker Fix
PLITONIT В экспресс
PLITONIT С Мрамор
PLITONIT клей для керамогранита 600×600
PLITONIT СуперКамин ТермоКлей
PLITONIT Ускоренный
PLITONIT клей для керамогранита 450X450
PLITONIT СтройЭкспресс
PLITONIT А
PLITONIT В Profi
PLITONIT Mosaic White
PLITONIT В PRO
Затирки для швов
PLITONIT Colorit Easy Fill
PLITONIT СOLORIT PREMIUM
PLITONIT COLORIT
PLITONIT Colorit Fast Premium
PLITONIT З
PLITONIT COLORIT FAST CLINKER
Ровнители
PLITONIT Финиш
PLITONIT Р3
PLITONIT Р2
PLITONIT Universal
PLITONIT Р1 Pro
PLITONIT Р1 Easy
PLITONIT Easy Floor
PLITONIT Р200
PLITONIT Р300
PLITONIT Ламинат Пол
PLITONIT СуперФиниш
PLITONIT Р Экспресс
PLITONIT UNIVERSAL МН
Штукатурки
PLITONIT Т1+
PLITONIT РемСостав
PLITONIT S10
PLITONIT S11
Шпаклевки
PLITONIT Кп Pro
PLITONIT К
PLITONIT ФинишСлой
Грунтовки
PLITONIT Готовый Грунт
PLITONIT Грунт БетонКонтакт
PLITONIT Грунт 1
PLITONIT Грунт Упрочняющий
PLITONIT Грунт Базовый
PLITONIT Грунт СуперКонтакт
PLITONIT Грунт СуперПол
PLITONIT АкваГрунт
PLITONIT Грунт 2 Эластик
Гидроизоляция
PLITONIT WaterProof Standard
PLITONIT ГидроЭласт
PLITONIT ГидроЛента
PLITONIT WaterProof Premium
PLITONIT ГидроЛента угол внутренний 90°
PLITONIT ГидроЛента угол внешний 270°
PLITONIT Манжета гидроизоляционная напольная 425х425мм
PLITONIT Манжета гидроизоляционная настенная 120х120 мм
PLITONIT ГидроСлой
PLITONIT ГидроСлой Экспресс
PLITONIT ГидроСтоп
PLITONIT ГидроЭласт 2К
Кладочные смеси
PLITONIT А
PLITONIT Мастер Кладки
PLITONIT Мастер Кладки Зимний
Смеси для устройства печей и каминов «Суперкамин»
PLITONIT СуперКамин ТермоКлей
PLITONIT СуперКамин ОгнеУпор
PLITONIT СуперКамин ТермоКладка
PLITONIT СуперКамин ТермоРемонт
PLITONIT СуперКамин ТермоКладка Глиняная
PLITONIT СуперКамин ТермоШтукатурка
Добавки для растворов
PLITONIT Антифриз
PLITONIT АнтиМороз
PLITONIT Эстрих
PLITONIT СуперСтяжка
PLITONIT СуперСтена
PLITONIT ВодоПреграда
PLITONIT СуперБетон
Система выравнивания плитки (СВП)
Зажим PLITONIT PROFI
Клин PLITONIT PROFI
Щипцы регулируемые PLITONIT
Средства по уходу за плиткой
PLITONIT защитная пропитка для клинкера и натурального камня
PLITONIT средство для удаления цементного налета
PLITONIT очиститель эпоксидного налета
PLITONIT средство для очистки керамогранита и клинкера
PLITONIT защитная пропитка для керамогранита
PLITONIT средство для очистки межшовных затирок и натурального камня
Как избавиться от плесени на стенах в квартире навсегда
Плесень обычно не вызывает у хозяев квартиры никаких опасений.
Все согласны, что грибок отнюдь не украшает стены комнат, однако не все знают и о его вредных свойствах. Грибковые споры, проникнув в организм человека, способствуют возникновению у него серьёзных хронических заболеваний. Чтобы предотвратить подобные проблемы, с безобидными на вид пятнами на стенах и потолке необходимо бороться. Один из эффективных методов – профессиональное уничтожение плесени, которое можно заказать в Клеаком.
Специализированные средства
В магазинах бытовой химии имеется целый арсенал различных средств, при помощи которых можно уничтожить плесень. Способы применения, объём, стоимость и эффективность у них разные. При покупке химических средств необходимо ориентироваться, прежде всего, на степень заражения помещений грибком. Так, если влажность в комнатах превышает норму (а это идеальная среда для плесени), то стоит обратить внимание на «Биотол-спрей», «Олимп стоп-плесень», «Quelyd антиплесень», «Unicum», «Dali». Практически все они в своём составе содержат абразивные вещества, отлично разъедающую саму структуру колонии грибка.
Но применять их нужно с осторожностью, в особенности, если в доме есть маленькие дети и аллергики.
Если грибок уже давно «поселился» в квартире, то его споры успели проникнуть глубоко в стену. А это значит, что поверхностной обработки может оказаться недостаточно. Тогда придётся снять верхний слой штукатурки и обработать сначала скребком, а затем и химикатами все повреждённые грибком участки. При выборе чистящего средства в этом случае нужно обратить внимание на его состав – в нём должна быть высокая концентрация хлора, растворителей, поверхностно-активных веществ. Таким препаратом, например, является «Фонгифлюид Альпа», который применяется для обработки сильно повреждённых грибком поверхностей.
Народные средства
Уничтожить небольшую колонию грибков помогут несложные рецепты, самостоятельно изготовленные из средств, которые всегда находятся под рукой. Среди них – хозяйственное мыло, столовый уксус, перекись водорода, нашатырный спирт, пищевая сода.
Предварительно участок стены нужно подготовить к чистке: снять обои, скребком убрать пятна плесени и верхний слой штукатурки. После обработать поверхность уксусом или 3% перекисью водорода. Водой эти средства разводить необязательно. А вот из соды или нашатыря необходимо приготовить раствор. Нашатырь разбавить водой в пропорции 1:1, а для соды подойдёт соотношение – 1 ст. ложка на стакан воды. Важный нюанс: нашатырный спирт нельзя смешивать с химическими препаратами, содержащими хлор. Вступив с хлором в реакцию, спирт начнёт выделять вредные вещества.
Хозяйственное мыло понадобится для обработки стен, которые не очень сильно поражены плесенью. Мыльный брусок нужно натереть на тёрке и растворить стружку в тёплой воде. Натереть стены губкой, смоченной в мыльном растворе, и оставить на несколько часов. Затем промыть проблемный участок водой и высушить.
Меры профилактики
Даже если удалось избавиться от плесени, не стоит забывать о мерах профилактики.
А иначе грибок может и вернуться. Стены в теневых зонах нужно периодически мыть мыльным раствором и затем высушивать их. После приёма душа и приготовления пищи не рекомендуется закрывать наглухо двери в ванную комнату или кухню. Наоборот, эти помещения следует хорошенько проветрить, а влажные стены протереть сухой тряпочкой. Если квартира сама по себе сырая, то не помешает приобрести осушитель воздуха. Ну а если причиной плесени послужили промёрзшие стены, то их необходимо утеплить.
РЕКЛАМА
Информация предоставлена ИП Семенов О.Ю.
ОГРНИП 306533121500029
БОЛЕЕ ПОДРОБНУЮ ИНФОРМАЦИЮ ВЫ МОЖЕТЕ ПОЛУЧИТЬ НА САЙТЕ: cleacom.ru
Все изображения и фотоматериалы предоставлены сайтом: cleacom.ru
Новости на Блoкнoт-Ростов-на-Дону
Эффекты лечения моноазидом пропидия (PMA) на анализ микобиома и бактериома муковисцидоза дыхательных путей во время обострения
1.
Stenbit AE, Flume PA. Легочные обострения при муковисцидозе. Curr Opin Pulm Med. 2011; 17: 442–447. [PubMed] [Google Scholar]
2. Ratjen F, McColley SA. Обновление муковисцидоза 2011. Am J Respir Crit Care Med. 2012; 185: 933–936. 10.1164/рксм.201202-0306УП
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Whiteson KL, Simone M, Lim YW, Schmieder R, Maughan H, Quinn R, et al.
Метаболиты выдыхаемого газа и бактериальные метагеномы из дыхательных путей при муковисцидозе указывают на активную ферментацию 2,3-бутандиона с нейтральным рН. ISME J. 2014; 8: 1247–1258. 10.1038/исмей.2013.229[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4. Quinn RA, Whiteson K, Lim YW, Salamon P, Bailey B, Mienardi S, et al.
Система культур на основе Виноградского показывает связь между микробным брожением и обострением муковисцидоза. Издательская группа ISME J. Nature; 2014;9: 1024–1038. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
5. Surette MG. Микробиом легких при муковисцидозе.
Энн Ам Торак Соц. 2014; 11: 61–65. [PubMed] [Google Scholar]
6. Rogers GB, Cuthbertson L, Hoffman LR, Wing PA, Pope C, Hooftman DA, et al.
Уменьшение систематической ошибки в анализе бактериального сообщества инфекций нижних дыхательных путей. Издательская группа ISME J. Nature; 2013;7:697–706. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
7. Zhao J, Schloss PD, Kalikin LM, Carmody LA, Foster BK, Petrosino JF, et al.
Десятилетняя динамика бактериального сообщества в дыхательных путях при муковисцидозе. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012; 109: 5809–5814. 10.1073/пнас.1120577109
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
8. Роджерс Г.Б., Штрессманн Ф.А., Коллер Г., Дэниелс Т., Кэрролл М.П., Брюс К.Д. Оценка диагностического значения нежизнеспособных бактериальных клеток при респираторных инфекциях. Диагностика Microbiol Infect Dis. 2008; 62: 133–141. 10.1016/j.diagmicrobio.2008.06.011
[PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
9. Веспер С.
, МакКинстри С., Хартманн С., Нис М., Йодер С., Веспер А. Количественная оценка жизнеспособности грибов в пробах воздуха и воды с использованием количественной ПЦР после обработки моноазидом пропидия (ПМА). J Микробиологические методы. 2008; 72: 180–184. 10.1016/j.mimet.2007.11.017
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Агусти Г., Фиттипальди М., Морато Дж., Кодони Ф. Жизнеспособная количественная ПЦР для оценки реакции Candida albicans на противогрибковое лечение. Приложение Microbiol Biotechnol. 2013; 97: 341–349.. 10.1007/с00253-012-4524-з
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Chiao T, Clancy TM, Pinto A, Xi C, Raskin L. Дифференциальная устойчивость бактериальных популяций питьевой воды к дезинфекции монохлорамином. Технологии экологических наук. 2014; 48: 4038–4047. 10.1021/эс4055725
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Vaishampayan P, Probst AJ, La Duc MT, Bargoma E, Benardini JN, Andersen GL, et al.
Новые взгляды на жизнеспособные микробные сообщества в чистых помещениях с низкой биомассой.
Издательская группа ISME J. Nature; 2013;7: 312–324. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
13. Нокер А., Рихтер-Хайтманн Т., Монтейн Р., Шурен Ф., Корт Р. Различение живых и мертвых клеток в бактериальных сообществах из проб воды из окружающей среды, проанализированных с помощью 454 пиросеквенирования. Интер микробиол. 2010; 13: 59–65. [PubMed] [Google Scholar]
14. Exterkate RAM, Zaura E, Brandt BW, Buijs MJ, Koopman JE, Crielaard W, et al.
Влияние обработки моноазидом пропидия на измеренный бактериальный состав клинических образцов после использования жидкости для полоскания рта. Clin Oral Investig. 2014;19: 813–822. 10.1007/с00784-014-1297-з
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
15. Венкатешваран К., Вайшампаян П., Сиснерос Дж., Пирсон Д.Л., Роджерс С.О., Перри Дж. Экологический микробиом Международной космической станции — микробиологические инвентаризации обломков фильтров МКС. Приложение Microbiol Biotechnol. 2014; 98: 6453–6466. 10.1007/s00253-014-5650-6
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16.
Deschaght P, Schelstraete P, Lopes dos Santos Santiago G, Van Simaey L, Haerynck F, Van Daele S, et al.
Сравнение культуры и количественной ПЦР для обнаружения Pseudomonas aeruginosa у нехронически инфицированных пациентов с муковисцидозом. БМС микробиол. 2010;10:245
10.1186/1471-2180-10-245
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Deschaght P, Schelstraete P, Van Simaey L, Vanderkercken M, Raman A, Mahieu L, et al.
Коррелирует ли улучшение состояния пациентов с муковисцидозом, госпитализированных по поводу легочного обострения, со снижением бактериальной нагрузки?
ПЛОС Один. 2013;8: e79010
10.1371/journal.pone.0079010
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Fréalle E, Decrucq K, Botterel F, Bouchindhomme B, Camus D, Dei-Cas E, et al.
Диагностика инвазивного аспергиллеза с использованием бронхоальвеолярного лаважа у гематологических пациентов: влияние содержания ДНК человека в бронхоальвеолярном лаваже на эффективность ПЦР в реальном времени.
Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2009 г.;28: 223–232. 10.1007/s10096-008-0616-1
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Toju H, Tanabe AS, Yamamoto S, Sato H. Праймеры ITS с высоким покрытием для ДНК-идентификации аскомицетов и базидиомицетов в образцах окружающей среды. ПЛОС Один. 2012;7: e40863
10.1371/journal.pone.0040863
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
20. Schloss PD, Westcott SL, Ryabin T, Hall JR, Hartmann M, Hollister EB, et al.
Представляем mothur: открытое, независимое от платформы, поддерживаемое сообществом программное обеспечение для описания и сравнения микробных сообществ. Appl Environ Microbiol. 2009 г.;75: 7537–7541. 10.1128/АЭМ.01541-09
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Cai Y, Sun Y. ESPRIT-Tree: иерархический кластерный анализ миллионов пиропоследовательностей 16S рРНК в квазилинейном вычислительном времени. Нуклеиновые Кислоты Res. 2011;39: е95
10.1093/нар/гкр349
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22.
McDonald D, Clemente JC, Kuczynski J, Rideout JR, Stombaugh J, Wendel D, et al.
Формат «Матрица биологических наблюдений» (БИОМ), или как я научилась не волноваться и полюбила оме-оме. Гигасайнс. 2012;1:7
10.1186/2047-217Х-1-7
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Гёкс Дж., Некрутенко А., Тейлор Дж. Галактика: комплексный подход к поддержке доступных, воспроизводимых и прозрачных вычислительных исследований в области наук о жизни. Геном биол. 2010;11: Р86
10.1186/ru-2010-11-8-r86
[Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Pruesse E, Quast C, Knittel K, Fuchs BM, Ludwig W, Peplies J, et al.
SILVA: всеобъемлющий онлайн-ресурс для проверки качества и выравнивания данных о последовательностях рибосомной РНК, совместимых с ARB. Нуклеиновые Кислоты Res. 2007; 35: 7188–719.6. 10.1093/нар/гкм864
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Delhaes L, Monchy S, Fréalle E, Hubans C, Salleron J, Leroy S, et al.
Микробиота дыхательных путей при муковисцидозе: сложное грибковое и бактериальное сообщество — значение для терапевтического лечения. ПЛОС Один. 2012;7: e36313
10.1371/journal.pone.0036313
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Goddard AF, Staudinger BJ, Dowd SE, Joshi-Datar A, Wolcott RD, Aitken ML, et al.
Прямые пробы легких при муковисцидозе указывают на то, что анализы образцов верхних дыхательных путей на основе ДНК могут искажать микробиоту легких. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012;109: 13769–13774. 10.1073/пнас.1107435109
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27. Logares R, Audic S, Bass D, Bittner L, Boutte C, Christen R, et al.
Образцы редких и многочисленных морских микробных эукариот. Карр Биол. 2014; 24: 813–821. 10.1016/j.куб.2014.02.050
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Galand PE, Casamayor EO, Kirchman DL, Lovejoy C. Экология редкой микробной биосферы Северного Ледовитого океана. Proc Natl Acad Sci U S A.
2009; 106: 22427–22432. 10.1073/пнас.0908284106
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Hammer Ø, Harper DAT, Ryan PD. Прошлое: Пакет программного обеспечения палеонтологической статистики для обучения и анализа данных. 2001; 4: 1–9. [Google Scholar]
30. Baxter CG, Dunn G, Jones AM, Webb K, Gore R, Richardson MD, et al.
Новая иммунологическая классификация аспергиллеза при муковисцидозе у взрослых. J Аллергия Клин Иммунол. ООО «Эльзевир»; 2013; 132: 560–566.e10. [PubMed] [Google Scholar]
31. Høiby N, Ciofu O, Bjarnsholt T. Биопленки Pseudomonas aeruginosa при кистозном фиброзе. Будущая микробиология. 2010;5: 1663–1674. 10.2217/fmb.10.125
[PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
32. Waters VJ, Stanojevic S, Sonneveld N, Klingel M, Grasemann H, Yau YCW, et al.
Факторы, связанные с реакцией на лечение легочных обострений у больных муковисцидозом. J Кистозные волокна. Эльзевир Б.В.; 2015 г.; 1–8. [PubMed] [Google Scholar]
33.
Méar JB, Kipnis E, Faure E, Dessein R, Schurtz G, Faure K, et al.
Взаимодействие Candida albicans и Pseudomonas aeruginosa: больше, чем оппортунистическая преступная ассоциация?
Мед Мал Инфекция. Эльзевир Массон САС; 2013; 43: 146–151. [PubMed] [Академия Google]
34. Манавату Э.К., Вагер Д.Л., Васкес Дж.А. Разработка и изучение чувствительности к противомикробным препаратам моделей мономикробных и полимикробных биопленок in vitro с Aspergillus fumigatus и Pseudomonas aeruginosa. БМС микробиол. BMC Микробиология; 2014;14:53
10.1186/1471-2180-14-53
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. Tavernier S, Coenye T. Количественная оценка Pseudomonas aeruginosa в многовидовых биопленках с использованием PMA-qPCR. Пир Дж. 2015;3: е787
10.7717/равный j.787
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Nguyen LDN, Viscogliosi E, Delhaes L. Микобиом легких: новая область респираторного микробиома человека. Фронт микробиол. 2015;6: 1–9.
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
37. Dickson RP, Erb-Downward JR, Freeman CM, McCloskey L, Beck JM, Huffnagle GB, et al.
Пространственные вариации микробиома легких здорового человека и адаптированная островная модель биогеографии легких. Энн Ам Торак Соц. 2015; 12: 821–830. 10.1513/Анналы АТС.201501-029OC
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Venkataraman A, Bassis CM, Beck JM, Young VB, Curtis JL, Huffnagle GB, et al.
Применение модели нейтрального сообщества для оценки структурирования микробиома легких человека. МБио. 2015;6: 1–9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
39. Marsland BJ, Gollwitzer ES. Взаимодействия хозяин-микроорганизм при заболеваниях легких. Нат Рев Иммунол. Издательская группа «Природа»; 2014; 14: 827–835. [PubMed] [Google Scholar]
40. Уилли Р.А., Флеминг Э.В., Махия Р., Уэйт Р.Д. Окружающая среда и последовательность колонизации являются ключевыми параметрами, определяющими сотрудничество и конкуренцию между штаммами муковисцидоза Pseudomonas aeruginosa и оральными комменсальными стрептококками.
ПЛОС Один. 2015; 10: 1–14. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
41. Touati K, Nguyen LDN, Delhaes L. Колонизация дыхательных путей условно-патогенными нитчатыми грибами у пациентов с муковисцидозом: последние обновления. Curr Fungal Infect Rep. 2014; 8: 302–311. [Google Scholar]
42. Willger SD, Grim SL, Dolben EL, Shipunova A, Hampton TH, Morrison HG, et al.
Характеристика и количественная оценка грибкового микробиома в серийных образцах от людей с муковисцидозом. Микробиом. 2014;2:40
10.1186/2049-2618-2-40
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
43. Ван Вурден Х.К., Грегори С., Браун Р., Маркези Дж.Р., Хугендорн Б., Мэтьюз И.П. Различия в грибах, присутствующих в образцах индуцированной мокроты от пациентов с астмой и неатопических контролей: исследование случай-контроль на уровне сообщества. BMC Infect Dis. инфекционные заболевания BMC; 2013;13:69
10.1186/1471-2334-13-69
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44.
Charlson E, Diamond JM, Bittinger K, Fitzgerald AS, Yadav A, Haas AR, et al.
Организмы, обогащенные легкими, и аберрантная бактериальная и грибковая респираторная микробиота после трансплантации легких. Am J Respir Crit Care Med. 2012; 186: 536–545. 10.1164/rccm.201204-0693OC
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Kurtzman C. Филогенетическое описание Saccharomyces, Kluyveromyces и других представителей Saccharomycetaceae, а также предложение новых родов Lachancea, Nakaseomyces, Naumovia, Vanderwaltozyma и Зиготоруласпора. FEMS Yeast Res. 2003;4: 233–245. [PubMed] [Google Scholar]
46. Taylor MJ, Bentham RH, Ross KE. Ограничения использования моноазида пропидия с количественной ПЦР для различения живых и мертвых легионелл в образцах биопленки. Микробиологические идеи. 2014;7: 15–24. 10.4137/МБИ.С17723
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Fittipaldi M, Nocker A, Codony F. Прогресс в понимании предпочтительного обнаружения живых клеток с использованием красителей жизнеспособности в сочетании с амплификации ДНК.
J Микробиологические методы. Эльзевир Б.В.; 2012; 91: 276–289. [PubMed] [Google Scholar]
48. Mangot J-F, Domaizon I, Taib N, Marouni N, Duffaud E, Bronner G, et al.
Кратковременная динамика моделей разнообразия: свидетельство постоянной повторной сборки внутри озерных мелких эукариот. Окружающая среда микробиол. 2013; 15: 1745–1758. 10.1111/1462-2920.12065
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Quero GM, Luna GM. Разнообразие редких и распространенных бактерий в поверхностных водах южной части Адриатического моря. Мар Геномикс. Эльзевир Б.В.; 2014; 17: 9–15. [PubMed] [Google Scholar]
50. Filkins LM, Hampton TH, Gifford AH, Gross MJ, Hogan DA, Sogin ML, et al.
Преобладание стрептококков и повышенное полимикробное разнообразие связаны со стабильностью больных муковисцидозом. J Бактериол. 2012; 194: 4709–4017. 10.1128/ДЖБ.00566-12
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. Roux D, Gaudry S, Dreyfuss D, El-Benna J, de Prost N, Denamur E, et al.