Почва пустыни россии: Пустыни и полупустыни России, животные и растения, климатический пояс, характеристика природной зоны

Полярные пустыни или высокоарктические тундры? Проблема зональности Арктики рассмотрена в статье российских географов и почвоведов в журнале «Eurasian Soil Science»

В исследовании природы полярных регионов существует немало вопросов. Один из них – это проблема зональности Арктики. Разные подходы к зональности воплотились в недавно изданном Национальном атласе Арктики.

Если самая высокоширотная зона на карте почвенно-географического районирования названа “арктической зоной (высокоарктической тундропустошью)”, то на карте растительности она уже определена как “высокоарктические тундры”, а на карте зон и типов поясности она отнесена к зоне тундр и названа “подзоной высокоарктических тундр (полярных пустынь)”. При оценке ландшафтной структуры территории Российской Арктики самая высокоширотная область делимитирована так же, как и на предыдущих картах, но отнесена она к “арктическим (полярным) пустыням”. Такая разница в подходах и представлениях и решение проблемы зональности Арктики требует современных и глубоких исследований всех компонентов экосистем, но особенно важно было исследовать компонент, одновременно относящийся к биоте и к почве, — биологическую составляющую почв. Этому и посвящена статья сотрудников Института географии РАН, Почвенного института и Московского государственного университета, вышедшая в апрельском номере журналов «Почвоведение» и «Eurasian Soil Science», соответственно, на русском и английском языках. Ссылки находятся в конце новости.

Почвы самого северного в России и вообще в восточном полушарии архипелага Земля Франца-Иосифа (ЗФИ), которые всеми исследователями однозначно отнесены к самой высокоширотной области Арктики, практически не изучались на протяжении шести десятилетий (с 1950 по 2010 гг.). После фундаментальных исследований Говорухи и Михайлова наступил длительный перерыв вплоть до организации Национального парка “Русская Арктика” и проекта “Арктический плавучий университет”, которые создали инфраструктуру для всестороннего изучения различных компонентов экосистем ЗФИ, включая почвы и микроорганизмы, населяющие их.

Несмотря на интенсификацию работ, почвы ЗФИ остаются новыми объектами для изучения специалистами практически любого направления почвоведения и экологии. Актуальность их исследования постоянно возрастает из-за обостренной реакции полярных экосистем ЗФИ на глобальные изменения климата. Целостная картина строения почвенного покрова архипелага, так же, как и всей высокоширотной части Арктики, еще не составлена. Недавние исследования сотрудников Института географии РАН Горячкина, Мергелова и Долгих в рамках экспедиций “Арктического плавучего университета” показали, что почвенный покров островов Алджер, Гукера, Земля Александры, Ферсмана и Хейса имеет мозаичное строение, которое определяется не столько широтным положением островов, сколько сложившимися на них местными условиями. На изученных участках соседствуют почвы высокоарктических тундр с развитыми подстилками и/или гумусовыми горизонтами и почвы высокоарктических пустошей, с органогенными горизонтами в виде тонкой криптогамной биопочвенной корки (biological soil crust) с редким присутствием сосудистых растений, обладающих очень разреженными корневыми системами. Почвы ЗФИ часто переувлажнены, иногда криотурбированы, а процессы аридного почвообразования в них пока не обнаружены. В связи с этим мы предложили использовать термин “пустошь” и отказаться от термина “полярная пустыня” в данном конкретном случае.

Перед авторами статьи стояла следующая задача – охарактеризовать на различных островах ЗФИ состояние таких почвенных параметров, как запасы и структура микробной биомассы, общее содержание органического углерода, а также почвенное дыхание (эмиссия СO2 c поверхности почвы). Эти параметры важны для решения указанной выше проблемы зональности Арктики.

Почвенный покров ЗФИ на островах Алджер, Ферсмана, Хейса, Гукера, Земля Александры состоит из чередующихся участков высокоарктических тундр, где развиты дерновые почвы и их сильнощебнистые разности, а также различные неполноразвитые почвы; многие из них характеризуются выраженными процессами криогенного погребения органического вещества. Участки высокоарктических пустошей характеризуются преобладанием неполноразвитых песчаных мерзлотных почв под лишайниковыми корками с разреженным покровом сосудистых растений. Почвы высокоарктических тундр имеют на порядок больше запасов углерода по сравнению с почвами пустошей и имеют уровни эмиссии CO2, сопоставимые с почвами арктических тундр. Почвы высокоарктических пустошей ЗФИ по запасам углерода и эмиссии диоксида углерода имеют переходный характер между почвами местных высокоарктических тундр и почвами Восточной Антарктиды.

Однако биомасса почвенных микроорганизмов в исследованных почвах ЗФИ, как высокоарктических тундр, так и пустошей, сильно не различается. Она сконцентрирована преимущественно в органогенных горизонтах (подстилочно-торфяных горизонтах, лишайниковых корках, оторфованном моховом очесе). В почвах высокоарктических пустошей вклад микробной биомассы в содержание общего органического углерода выше в несколько раз по сравнению с почвами местных тундр. По ряду микробиологических характеристик исследованные почвы ЗФИ ближе к почвам Антарктиды, а по некоторым показателям – даже к почвам жарких пустынь. В целом, можно сказать, что в микробиологическом отношении почвы ЗФИ занимают место в следующем ряду: почвы арктических тундр – почвы ЗФИ – почвы Восточной Антарктиды – почвы жарких пустынь.

В целом, этот «раунд» между высокоарктическими тундрами и полярными пустынями закончился вничью. Похоже, почвенные и биотические характеристики в экстремальных условиях могут сильно расходиться.

Русская версия

Английская версия

Пустыни стр. 118 — 125. Окружающий мир 4 класс 1 часть

1) Рассмотри фотографии и представь себе пустыню. Чем она отличается от степи? Опиши пустыню по фотографиям.

Пустыня представляет совершенно безжизненное пространство, в котором лишь изредка встречается чахлая растительность. Почва пустыни — песок или потрескавшаяся глина. Здесь нет степных трав и цветов, здесь очень мало животных.

2) Найди на карте природных зон полупустыни и пустыни. Что ты можешь рассказать о них по карте? Научись показывать на карте эти природные зоны.

Природная зона пустынь и полупустынь расположена на юге Европейской части России. Она показана ярко-жёлтым цветом. Пустыни в нашей стране расположены возле северо-западной оконечности Каспийского моря.

Площадь пустынь сравнительно невелика, они находятся южнее зоны степей, и получают ещё больше солнечного тепла. А значит там очень жаркий и засушливый климат.

3) Рассмотрите в гербарии и на рисунке растения пустынь. Выскажите предположения, как эти растения приспособлены к условиям жизни в пустыне.

• Верблюжья колючка — имеет очень длинные корни, которые позволяют ей находить воду на большой глубине.
• Колосняк — имеет тонкие листья, которые почти не испаряют влагу.
• Джузгун — имеет листья — веточки, тоже не испаряющие влагу. Плоды легко переносятся ветром и укореняются в удобном месте.

4) По рисунку на с. 120—121 познакомьтесь с животным миром пустыни.

Животный мир пустыни относительно скуден.

Из крупных животных в пустынях водятся лишь верблюды и сайгаки, последние, впрочем, больше предпочитают полупустыни и степи. Зато в пустыне можно встретить грызунов, например песчанку, попадаются здесь ежи, много ящериц и змей, которые ловят грызунов и насекомых, таких как жуки. Водятся в пустыне степные лисицы — корсак, летают немногие птицы — саджа.

Большинство животных пустыни ведут ночной образ жизни и пьют очень мало воды.

5) Расскажите по этому рисунку об экологических связях в пустыне. Изготовьте модель цепи питания, характерной для пустыни.

Пример экологических связей в пустыне для 4 класса

В очень засушливые годы стада сайгаков уходят из пустыни, потому что им становится нечего есть, вся трава в это время исчезает. Исчезновение травы приводит к уменьшению поголовья тушканчиков и песчанок, а значит уходят в другие места корсаки, улетают хищные птицы. Меньше становится и насекомых, что сказывается на численности пресмыкающихся.

Пример модели цепи питания для пустыни для 4 класса

• Верблюжья колючка — Верблюд.
• Колосняк — Песчанка — Корсак.
• Колосняк — Кобылка — Ящерица — круглоголовка — Саджа.

Обсудим!

Сравните природу зоны пустынь с природой степей.

Природа пустынь отличается меньшим разнообразием, чем природа степей. В пустынях очень мало растений, лишь немногие из них сумели приспособиться к местным условиям. Мало в пустыне птиц, водятся только хищные, мало копытных и грызунов. Но в пустынях больше пресмыкающихся, которые хорошо переносят высокую температуру воздуха. Насекомые представлены в основном жуками, встречаются кобылки.

Проверь себя

1. Покажи на карте зоны полупустынь и пустынь.

Зоны пустынь и полупустынь следует искать возле северо-западной оконечности Каспийского моря. Они показаны жёлтым цветом.

2. Дай краткую характеристику зоны пустынь по плану, приведённому на с. 71.

Краткая характеристика зоны пустынь и полупустынь для 4 класса

• Название зоны: Зона пустынь и полупустынь. Обозначается жёлтым цветом.
• Особенности природы: Животный и растительный мир очень скуден. Климатические условия жаркие и засушливые. Водятся грызуны, на которых охотятся хищные птицы, змеи, корсак. Водятся насекомые, которые питаются пустынными злаками, а на них охотятся ящерицы, ежи, змеи. В пустыне почти нет воды и весь животный и растительный мир приспособился к этому.
• Использование зоны человеком: Человек почти не использует пустыни в хозяйственных целях. Только как место экологического туризма.
• Экологическая проблема пустынь — браконьерство. В пустынях устроено несколько заповедников.

Задания для домашней работы

1. Нарисуй, как ты представляешь себе пустыню. Можно изготовить макет участка пустыни.

Готовые рисунки “Как я себе представляю пустыню”

2. Представьте вместе с друзьями, что вы учёные и отправляетесь в научную экспедицию в пустыню. Напишите рассказ об этом.

Рассказ “Научная экспедиция” в пустыню для 4 класса

Этим летом мы отправились в научную экспедицию в пустыню. Мы основательно подготовились к этому путешествию, потому что пустыня отличается очень жарким и засушливым климатом. Поэтому мы взяли много воды, припасы, лёгкую белую одежду для защиты от палящих лучей солнца, палатки.

Мы собирались исследовать животный мир пустынь.

Пустыня нас не разочаровала. Это огромное море песка, который вздымается до самого горизонта песчаными волнами — барханами. Там постоянно дует жаркий ветер и песок переносится с места на места, барханы передвигаются.

Первым животным, которое мы увидели в пустыне, был верблюд. Его не зря называют кораблём пустыни. На своих мозолистых ногах верблюд буквально скользит по песку. При этом верблюд может долгое время обходиться без воды.

Днём пустыня кажется мёртвой. Мы проехали много километров, но не встретили почти никакой живности. Только редкие кустики верблюжьей колючки росли тут и там, да лениво скользили по песку змеи.

Но ночью пустыня уже не казалась нам безжизненной. В темноте сверкали глаза песчанок и тушканчиков, ежей, слышались странные звуки. Прямо к нашей палатке выбежала ящерица — круглоголовка и поймала жука-скарабея.

Под утро мимо пробежало стадо сайгаков.

В ходе нашей экспедиции мы узнали, что несмотря на суровые климатические условия, даже в пустыне есть жизнь. Многие животные отлично приспособились к этим условиям, ведут ночной образ жизни, прячутся от солнца в норках, едят пустынные злаки и другие растения.

На следующем уроке

Вспомни, с какими природными зонами мы уже познакомились. Где нам осталось побывать? Если тебе приходилось бывать на Черноморском побережье Кавказа, приготовься рассказать об этом.

Мы познакомились почти со всеми природными зонами, которые можно найти в нашей стране. Мы были в арктических пустынях, в тундре, тайге, смешанных и широколиственных лесах, в степях и пустынях.

Нам осталось побывать только в субтропических лесах, которые растут на побережье Чёрного моря. Это вечнозелёные густые леса, полные различной жизни. Климат здесь очень хороший, необычайно тёплое и влажное лето, тёплые зимы с обильными осадками. Снег здесь почти никогда не бывает.

Руководство по управлению чертополохом в России — UC IPM

УЦ ИПМ Главная >
Дома, сады, ландшафты и газоны >
Русский чертополох

Чертополох русский, Salsola spp.

Заражение чертополохом русским, Salsola spp.

Проросток чертополоха русского, ветреницы, перекати-поля, Salsola spp.

Листья на молодом растении чертополоха.

Голое, свернутое в спираль семя чертополоха.

чертополох русский, также известный как перекати-поле, относится к семейству маревых.
(Chenopodiaceae). Его научное название Salsola tragus, , но он также был известен как Salsola iberica, Salsola.
kali, и Salsola australis. Это летний однолетник, произрастающий на юго-востоке России и в Западной Сибири.
был впервые завезен в Соединенные Штаты в 1873 году русскими иммигрантами в качестве загрязнителя льняного семени в Южной Америке.
Дакота. После интродукции он распространяется зараженными семенами, молотильными бригадами, железнодорожными вагонами (особенно скотом).
автомобилей), а также ветром распространения семян. В 1895 Русский чертополох переместился на побережье Тихого океана в
загрязненные железнодорожные вагоны, которые перевозили скот в Ланкастер в Долине Антилоп в Калифорнии. Сегодня это
распространен на западе Соединенных Штатов, заняв около 100 миллионов акров. Это особенно хорошо
приспособлен к климату Калифорнии с зимними осадками и летней засухой.

Чертополох русский в первую очередь является сорняком на участках с нарушенной почвой, например, вдоль дорог и ограждений.
Он также распространен на пустырях и других неурожайных участках, в полевых и овощных культурах и на плохо ухоженных ландшафтах.
Это редко является проблемой в хорошо ухоженных садах или газонах.

ИДЕНТИФИКАЦИЯ

Чертополох русский – кустарниковый летний однолетник с многочисленными тонкими восходящими стеблями, которые при созревании становятся довольно одревесневшими.
Стебли варьируются от 8 до 36 дюймов в длину и обычно имеют красноватые или пурпурные полосы. Всходы имеют очень мелко
рассеченные листья, почти похожие на хвою. Листья молодых растений мясистые, темно-зеленые, узкие, около
1 дюйм в длину. Молодые растения пригодны на корм скоту и иногда используются для выпаса скота. По мере созревания растения в
С июля по октябрь старые листья становятся короткими и жесткими с заостренным концом. Одинокий, незаметный
у цветов нет лепестков, и они расположены над парой маленьких прицветников с шипами на концах (небольшой видоизмененный лист у основания цветка).
цветок) в большинстве пазух листьев (где узкие листья встречаются со стеблем). Прицветники и колючие листья предотвращают хищничество
травоядными, когда растение приближается к зрелости. Общая форма растения становится от овальной до круглой, а в зрелом возрасте может
достигают диаметра от 18 дюймов до 6 футов или более при благоприятных условиях влажности и плодородия почвы. После
растение засыхает, основание стебля становится ломким и отламывается на уровне почвы осенью и в начале зимы. Эти круглые,
колючие растения способны рассеивать семена на многие мили, пока они кувыркаются на ветру. Эта характеристика рассеивания
привело к более часто используемому названию перекати-поле.

Было много таксономической путаницы с видами рода Salsola в Калифорнии. Недавний
работа продемонстрировала, что то, что когда-то называлось Salsola tragus , вероятно, морфологически состоит из трех или более
похожие виды, отличающиеся размерами и формой цветков.

ЖИЗНЕННЫЙ ЦИКЛ

Семя чертополоха русского представляет собой голый, свернутый зародыш или проросток внутри
семя, которое начинает разворачиваться, когда подвергается воздействию соответствующей температуры (от 52° до 9°С).0°F) и условиях влажности.
Когда он разворачивается, молодой стержневой корень проникает в почву примерно через 12 часов, что делает период прорастания довольно длительным.
быстрый и дающий русскому чертополоху решающее преимущество перед многими другими растениями в условиях ограниченной влажности. А
минимальное количество влаги, продолжающееся всего несколько часов, позволит прорастанию и росту корней в более глубокие, подповерхностные
влага.

Чертополох обычно не прорастает в твердой почве: почва на участке должна быть рыхлой. Вероятный
места для прорастания включают пустыри, заброшенные сады и сельскохозяйственные поля, обочины дорог, ограждения — любые
открытый участок с рыхлой почвой. Прорастание обычно происходит в конце зимы или ранней весной, когда семена могут воспользоваться преимуществами
зимней влаги. Всхожесть семян быстро теряется в почве. Более 90% семян либо прорастают, либо загнивают в
почвы в первый год.

Растение чертополох русский чрезвычайно засухоустойчив. Стержневой корень может проникать в почву на несколько футов, чтобы достичь
подземная влага. Ранние листья линейные и мясистые, очень похожие на сосновые иголки, но по мере взросления растения более поздние
листья короткие и колючие и гораздо более способны сохранять влагу. Русский чертополох обычно созревает поздно.
летом. Семя распространяется, когда зрелые растения отделяются от основания и уносятся ветром. Большой русский
растение чертополох может дать более 200 000 семян. Весной, спустя месяцы после их распространения, можно
следы перекати-поля по вспаханным полям проследить по зеленым следам прорастающих всходов чертополоха русского.

Чертополох русский особенно хорошо приспособлен к условиям пустыни. Он может переносить щелочные условия почвы и
очень конкурентоспособна, когда влага является ограничивающим фактором для роста другой растительности, когда почвы нарушены,
или когда конкурирующая растительность подавляется чрезмерным выпасом скота или плохим посевом. Если влажность не предельная,
Чертополох русский менее конкурентоспособен с другими видами. Всходы чертополоха русского подавляются, когда другие растения
укореняются первыми и затеняют солнечный свет.

УДАР

Поздней осенью и в начале зимы этот назойливый вредитель становится заметным, так как вырывается из почвы и разносится ветром.
по дорогам и полям. Хотя русский чертополох или перекати-поле вызывает в воображении образы старого Запада, его можно
серьезный вредитель сорняков. В сельскохозяйственных районах чертополох может снижать урожайность и качество многих сельскохозяйственных культур, особенно
люцерна и мелкие зерна. Истощает почвенную влагу, мешает обработке почвы, служит укрытием
или источником пищи для многих насекомых, позвоночных вредителей и болезней сельскохозяйственных культур, таких как курчавая верхушка, которая поражает многие культуры, включая
картофель и фасоль. Русский чертополох также может угрожать местным растительным экосистемам. Крупные заводы могут снизить безопасность на дорогах
загораживая обзор вдоль полосы отчуждения и заставляя водителей сворачивать в сторону, пытаясь избежать столкновения
с брошенными ветром растениями. Во многих районах растения скапливаются вдоль рядов деревьев и ограждений, что создает серьезную опасность возгорания.
что требует часов ручного труда для очистки и утилизации. Сообщалось, что лесные пожары в прериях могут
быстро распространяется, когда зажженные шары горящего чертополоха проносятся по лугам. Русский чертополох является основным
проблема вдоль Калифорнийского акведука, где он может мешать системе подачи воды и насосным системам. Много людей
чувствительны к чертополоху русскому и проявляют кожную сыпь и аллергические реакции после контакта с растением. Небольшой
царапины или ссадины от растения могут вызвать зуд или покраснение кожи. Переносимая ветром пыльца русских
чертополох может вызвать аллергическую реакцию у людей летом.

УПРАВЛЕНИЕ

Биологический контроль. Бороться с чертополохом сложно. Были предприняты многочисленные попытки через
лет на импорт агентов биологической борьбы, таких как насекомые, но ни один из них не увенчался успехом. Биологический контроль
агенты утвердились, но не обеспечивают достаточного контроля. Однако на горизонте есть надежда. Там
недавний интерес к интродукции пузырчатого клеща, Aceria salsolae , для борьбы с чертополохом в России. А
Известно, что этот клещ, обитающий в Средиземноморском бассейне, нападает только на чертополох русский и останавливает его, убивая
советы по выращиванию. Несколько других потенциальных агентов биологической борьбы, таких как гусеница, питающаяся семенами и просверливающая стебель.
и два разных долгоносика также находятся под следствием.

Управление домашним ландшафтом

Методы борьбы с культурой, такие как скашивание или уничтожение молодых растений другими способами, могут помешать производству семян.
Избегайте дискования или рыхления почвы на заброшенных участках, потому что рыхлая почва необходима для прорастания чертополоха русского.
и, следовательно, может усугубить ситуацию. Сжигание иногда используется для уничтожения накопленного русского чертополоха.
растения. Хотя это может устранить накопившиеся органические остатки и некоторое количество семян, большая часть семян уже будет
был распространен. Посадка конкурентоспособных, более желанных видов может быть эффективным методом предотвращения
укоренение чертополоха в большинстве неурожайных сред. Чертополох русский плохо конкурирует в ситуациях с твердым, регулярно
орошаемой почве, и это редко является проблемой в управляемых садах, газонах или ландшафтах. Гербициды редко
необходим в приусадебных участках и ландшафтах для борьбы с чертополохом русским.

Менеджмент в коммерческих и придорожных зонах

Агротехнические приемы, рекомендуемые для домашних ландшафтов, могут помочь контролировать это растение вдоль дорог или
в технических культурах. Кроме того, существует множество гербицидов, которые будут контролировать русский чертополох в сельскохозяйственных культурах.
и неурожайные площади. Направьте лечение на контроль незрелых растений, чтобы они не давали семян. Выбор
Выбор подходящего гербицида зависит от участка или культуры.

Довсходовые гербициды. Довсходовые гербициды вносятся в почву до того, как семена сорняков прорастут и
обычно вносятся в почву при орошении или дожде. Наиболее эффективными довсходовыми гербицидами являются атразиновые.
(Аатрекс), бромацил (Хивар), хлорсульфурон (Телар), гексазинон (Велпар), имазапир (Арсенал), напропамид (Девринол),
симазин (Принцеп) и сульфометурон (Уст). Другие довсходовые гербициды, которые зарегистрированы, но лишь умеренно
Эффективны в борьбе с чертополохом алахлор (Лассо), норфлуразон (Предик), оризалин (Сурфлан), пендиметалин
(Prowl), продиамин (Endurance), пронамид (Kerb) и трифлуралин (Treflan). Посмотреть онлайн унифицированный университет
Руководство IPM по борьбе с вредителями для конкретных материалов, зарегистрированных для сельскохозяйственных культур.

Устойчивые к гербицидам биотипы осота русского развились всего за пару лет после обработки
хлорсульфурон (телар) или сульфометурон (уст). Избегайте повторного использования одного гербицида или гербицидов,
тот же способ действия для предотвращения развития устойчивых к гербицидам популяций.

Послевсходовые гербициды. Послевсходовые гербициды применяются к растениям, но время имеет решающее значение. Для лучшего
результаты, эти гербициды необходимо применять, пока сорняк находится на ранней стадии роста, предпочтительно на ранней стадии роста
стадии, прежде чем он затвердеет и начнет производить колючие ветви. Не используйте послевсходовые гербициды для
попытайтесь контролировать зрелые семена (либо на растении, либо на земле), так как они неэффективны для этой цели.
Кроме того, послевсходовые гербициды плохо контролируют более позднюю колючую стадию чертополоха русского. Если дождь
или орошение происходит после послевсходового применения, могут появиться дополнительные всходы, которые потребуют будущих обработок.
Послевсходовые гербициды, которые эффективны при правильном применении, включают дикамбу (2,4-D, Banvel или Vanquish),
глюфосинат (Finale, Liberty или Rely), глифосат (Roundup) и паракват (Gramoxone).

ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ ОБ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ПЕСТИЦИДОВ

ССЫЛКИ

Хикман, Дж. К., изд. 1993. Руководство Джепсона: Высшие растения Калифорнии. Беркли: ун-т. Калифорния Пресс.

ДиТомасо, Дж. М. и Э. А. Хили. 2007. Сорняки Калифорнии и других западных штатов. Окленд: ун-т. Калифорния
Агр. Нац. Рез. Опубл. 3488.

Родс, В. А., Э. Ф. Фролич и А. Уолис. 1967. Семена чертополоха русского. Калифорния Сельскохозяйственный. 21(4):2.

Смит Л., Р. Собхиан и М. Кристофаро. 2006. Перспективы биологической борьбы с чертополохом русским (перекати-поле).
Симпозиум Калифорнийского совета по инвазивным растениям, 1 ноября 2006 г. 41: 120–133. Доступен в Интернете в Службе сельскохозяйственных исследований Министерства сельского хозяйства США.
По состоянию на 12 декабря 2007 г.

Whitson, T.D., L.C. Burrill, S.A. Dewey, D.W. Cudney, B.E. Nelson, R.D. Lee и R. Parker. 2002. Сорняки
Запад . Джексон, Вайоминг: Univ. Вайоминг и Западное общество изучения сорняков.

ПУБЛИКАЦИЯ ИНФОРМАЦИЯ

Заметки о вредителях: русский
Thistle
Публикация UC ANR 7486

Авторы: С. Б. Орлофф, UC Cooperative Extension, Siskiyou Co.; Д. В. Кадни, заслуженный деятель ботаники и растениеводства, Калифорнийский университет в Риверсайде; К. Л. Элмор, заслуженный деятель науки о растениях, Калифорнийский университет в Дэвисе; Дж. М. ДиТомасо, Наука о растениях, Калифорнийский университет в Дэвисе,
Подготовлено Программой UC Statewide IPM, Калифорнийский университет, Дэвис, Калифорния 95616

PDF : Для отображения PDF-документа может потребоваться
PDF-ридер.

Верх страницы

Почвенные бактериальные сообщества пустынь Сахара и Гибсон: физиологические и таксономические характеристики

1. Stan-Lotter H, Fendrihan S. Адаптация микробной жизни к экстремальным условиям окружающей среды. Вена, Нью-Йорк: Springer; 2012. [Google Академия]

2. Чесворт В. Энциклопедия почвоведения. Springer Science & Business Media; 2007. [Google Scholar]

3. Pointing S, Belnap J. Микробная колонизация и контроль в системах засушливых земель. Nat Rev Microbiol. 2012; 10: 551–562. [PubMed] [Google Scholar]

4. Ротшильд Л.Дж., Манчинелли Р.Л. Жизнь в экстремальных условиях. Природа. 2001; 409:1092–1101. [PubMed] [Google Scholar]

5. Rampelotto PH. Биотехнология экстремофилов. Международное издательство Спрингер; 2016. [Google Академия]

6. Гудфеллоу М., Нуиуи И., Сандерсон Р. и соавт. Редкие таксоны и темные микробные вещества: новые биоактивные актинобактерии изобилуют почвами пустыни Атакама. Антон Леу. 2018; 111:1–18. [PubMed] [Google Scholar]

7. Уайт Д., Драммонд Дж. Т., Фукуа С. Физиология и биохимия прокариот. Нью-Йорк: Издательство Оксфордского университета; 2007. [Google Scholar]

8. Preston LJ, Dartnell LR. Планетарная обитаемость: уроки, извлеченные из земных аналогов. Int J Astrobiol. 2014;13:81–98. [Google Scholar]

9. Ван Бремен Н., Буурман П. Почвообразование. Springer Science & Business Media; 2002. [Google Scholar]

10. Coleman DC, Callaham MA, Crossley DA., Jr . Основы почвенной экологии. Академическая пресса; 2017. [Google Scholar]

11. Paul EA. Почвенная микробиология, экология и биохимия. Академическая пресса; 2014. [Google Scholar]

12. Ван Гестель Н.К., Райшке С., Боат Э. Температурная чувствительность роста бактерий в жаркой почве пустыни с большими колебаниями температуры. Почва Биол Биохим. 2013;65:180–185. [Академия Google]

13. Köberl M, Müller H, Ramadan EM, et al. Фермерство в пустыне извлекает выгоду из микробного потенциала засушливых почв и способствует разнообразию и здоровью растений. ПЛОС Один. 2011;6:e24452. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

14. Дион П. Микробиология экстремальных почв. Спрингер; 2008. [Google Scholar]

15. Махаланяне Т.П., Вальверде А., Ганнигл Э. и др. Микробная экология эдафических систем жарких пустынь. FEMS Microbiol Rev. 2015; 39: 203–221. [PubMed] [Академия Google]

16. Лестер Э.Д., Сатоми М., Понсе А. Микрофлора экстремально засушливых почв пустыни Атакама. Почва Биол Биохим. 2007; 39: 704–708. [Google Scholar]

17. Азуа-Бустос А., Каро-Лара Л., Викунья Р. Открытие и микробный состав самого засушливого участка сверхзасушливой пустыни Атакама, Чили. Environ Microbiol Rep. 2015; 7:388–394. [PubMed] [Google Scholar]

18. Меола М., Лаззаро А., Зейер Дж. Бактериальный состав и выживание на частицах пыли Сахары, перенесенных в европейские Альпы. Фронт микробиол. 2015;6:1454. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

19. дель Кармен Монтеро-Каласанс М., Гёкер М., Роде М. и др. Геодерматофилус
сиккатус вид. ноя гг., выделен из засушливых песков пустыни Сахара в Чаде. Антон Леу. 2013; 103: 449–456. [PubMed] [Google Scholar]

20. Boubetra D, Sabaou N, Zitouni A, et al. Таксономия и химическая характеристика новых антибиотиков, продуцируемых штаммом Saccharothrix SA198, выделенным из почвы Сахары. Микробиолог Рез. 2013; 168: 223–230. [PubMed] [Академия Google]

21. Holmes AJ, Bowyer J, Holley MP, et al. Разнообразные, еще не культивированные представители подразделения Rubrobacter из Actinobacteria широко распространены в засушливых почвах Австралии. FEMS Microbiol Ecol. 2000;33:111–120. [PubMed] [Google Scholar]

22. Heulin T, De Luca G, Barakat M, et al. Бактериальная адаптация к жарким и сухим пустыням. В: Стэн-Лоттер Х., Фендрихан С., редакторы. Адаптация микробной жизни к экстремальным условиям окружающей среды. Чам: Спрингер; 2017. С. 75–9.8. [Google Scholar]

23. Abed RM, Ramette A, Hübner V, et al. Микробное разнообразие источников эоловой пыли из отложений соленых озер и биологических почвенных корок в засушливой Южной Австралии. FEMS Microbiol Ecol. 2012; 80: 294–304. [PubMed] [Google Scholar]

24. De Deckker P, Munday CI, Brocks J, et al. Характеристика крупной пыльной бури, обрушившейся на восточную часть Австралии в сентябре 2009 г .; мультидисциплинарный подход. Эолийский рез. 2014;15:133–149. [Академия Google]

25. Horikoshi K, Antranikian G, Bull AT, et al. Справочник экстремофилов. Спрингер, СМИ науки и бизнеса; 2010. [Google Scholar]

26. Rainey FA, ​​Ray K, Ferreira M, et al. Большое разнообразие устойчивых к ионизирующему излучению бактерий, выделенных из почвы пустыни Сонора, и описание девяти новых видов рода Deinococcus , полученных из одного образца почвы. Приложение Environ Microb. 2005; 71: 5225–5235. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

27. Shukla M, Chaturvedi R, Tamhane D, et al. Множественная стрессоустойчивость устойчивых к ионизирующему излучению бактериальных изолятов, полученных из различных местообитаний: корреляция между стрессами. Карр микробиол. 2007; 54: 142–148. [PubMed] [Академия Google]

28. Ю ЛЖ, Луо ХС, Лю М и др. Разнообразие устойчивых к ионизирующему излучению бактерий, полученных из пустыни Такла-Макан. J Базовая микроб. 2015;55:135–140. [PubMed] [Google Scholar]

29. Чатер К.Ф., Чандра Г. Эволюция развития Streptomyces проанализирована путем сравнения геномов. FEMS Microbiol Rev. 2006; 30: 651–672. [PubMed] [Google Scholar]

30. Gao Q, Garcia-Pichel F. Микробные ультрафиолетовые солнцезащитные средства. Nat Rev Microbiol. 2011; 9: 791–802. [PubMed] [Академия Google]

31. Мохаммадипанах Ф., Винк Дж. Актинобактерии из засушливых и пустынных местообитаний: разнообразие и биологическая активность. Фронт микробиол. 2016;6:1541. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

32. Couradeau E, Karaoz U, Lim HC, et al. Бактерии повышают температуру поверхности почвы в засушливых районах за счет производства солнцезащитных фильтров. Нац коммун. 2016;7:10373. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

33. Tyc O, Song C, Dickschat JS и др. Экологическая роль летучих и растворимых вторичных метаболитов почвенных бактерий. Тенденции микробиол. 2017;25:280–292. [PubMed] [Google Scholar]

34. Perron GG, Whyte L, Turnbaugh PJ, et al. Функциональная характеристика бактерий, выделенных из древней арктической почвы, выявляет различные механизмы устойчивости к современным антибиотикам. ПЛОС Один. 2015;10:e0069533. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [Google Scholar]

35. Несме Дж., Симонет П. Резистом почвы: критический обзор происхождения устойчивости к антибиотикам, экологии и потенциала распространения у теллурических бактерий. Окружающая среда микробиол. 2015;17:913–930. [PubMed] [Академия Google]

36. Глунт К.Д., Бланфорд Дж.И., Паайманс К.П. Химические вещества, климат и контроль: повышение эффективности средств борьбы с переносчиками малярии за счет учета соответствующих температур. PLoS Патог. 2013;9:e1003602. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

37. Данные Государственного бюро метеорологии Австралии. Доступно по адресу: http://shop.bom.gov.au/.

38. Уилли Дж.М., Шервуд Л., Вулвертон С.Дж. Микробиология Прескотта, Харли и Кляйна. Нью-Йорк: Высшее образование McGraw-Hill; 2008. [Google Академия]

39. Чепцов В.С., Воробьева Е.А., Осипов Г.А., и соавт. Микробная активность в марсианских аналогах почв после ионизирующего излучения: последствия для сохранения подземной жизни на Марсе. АИМС микробиол. 2018; 4: 541–562. [Google Scholar]

40. Горленко М.В., Майорова Т.Н., Кожевин П.А. Микробные сообщества. Берлин: Спрингер; 1997. Нарушения и их влияние на модели использования субстрата в почвенных микробных сообществах; стр. 84–93. [Google Scholar]

41. Горленко М.В., Кожевин П.А. Мультисубстратное тестирование природных микробных сообществ. Москва: МАКС Пресс; 2005. с. 88. [Google Академия]

42. Marchesi JR, Sato T, Weightman AJ, et al. Разработка и оценка полезных праймеров для ПЦР, специфичных для бактерий, которые амплифицируют гены, кодирующие бактериальную 16S рРНК. Приложение Environ Microb. 1998; 64: 795–799. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

43. Weisburg WG, Barns SM, Pelletier DA, et al. Амплификация 16S рибосомной ДНК для филогенетического исследования. J Бактериол. 1991; 173: 697–703. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

44. DeLong EF. Археи в прибрежной морской среде. P Natl Acad Sci USA. 1992;89:5685–5689. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

45. Klindworth A, Pruesse E, Schweer T, et al. Оценка общих праймеров для ПЦР гена рибосомной РНК 16S для классических исследований и исследований разнообразия на основе секвенирования следующего поколения. Нуклеиновые Кислоты Res. 2013;41:e1. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

46. Lane DJ. Секвенирование 16S/23S рРНК. В: Stackebrandt E, Goodfellow M, редакторы. Методы нуклеиновых кислот в бактериальной систематике. Западный Сассекс: John Wiley & Sons Ltd; 1991. стр. 115–175. [Google Scholar]

47. Герхардт П. Методы общей и молекулярной бактериологии. Американское общество микробиологии; 1994. [Google Scholar]

48. Чернов ИЮ, Лысак ЛВ. Методические материалы к семинарам по курсу «Общая экология». Москва: МАКС Пресс; 2008. [Книга на русском] [Google Scholar]

49. Кожевин П.А. Микробные сообщества в природе. Москва: МГУ; 1989. [Книга на русском] [Google Scholar]

50. Nicholson WL, McCoy LE, Kerney KR, et al. Водные экстракты марсианского аналога реголита, который имитирует место посадки Феникса, не подавляют прорастание спор или рост модельных загрязнителей космического корабля Bacillus subtilis 168 и Bacillus pumilus SAFR-032. Икар. 2012;220:904–910. [Google Scholar]

51. Drees KP, Neilson JW, Betancourt JL, et al. Структура бактериального сообщества в гипераридном центре пустыни Атакама, Чили. Приложение Environ Microb. 2006; 72: 7902–7908. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

52. Janssen PH, Yates PS, Grinton BE, et al. Улучшенная культивируемость почвенных бактерий и выделение в чистой культуре новых членов отделов Acidobacteria , Actinobacteria, Proteobacteria и Verrucomicrobia . Приложение Environ Microb. 2002; 68: 2391–2396. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

53. Storz G, Imlayt J. Окислительный стресс. Curr Opin Microbiol. 1999; 2: 188–194. [PubMed] [Google Scholar]

54. Fagliarone C, Mosca C, Ubaldi I, et al. Предотвращение окисления белков коррелирует с устойчивостью к высыханию и радиации жарких и холодных пустынных штаммов цианобактерий Chroococcidiopsis . Экстремофилы. 2017;21:981–991. [PubMed] [Академия Google]

55. Маргесин Р., Митева В. Разнообразие и экология психрофильных микроорганизмов. Рез микробиол. 2011; 162:346–361. [PubMed] [Google Scholar]

56. Xiao M, Salam N, Li WJ. Georgenia Deserti sp. ноя ., галотолерантная актинобактерия, выделенная из образца пустыни. Int J Syst Evol Microbiol. 2018;68:1135–1139. [PubMed] [Google Scholar]

57. Campbell JH, Zak JC, Jeter RM, et al. Воздействие окружающей среды на распространение пригодных для культивирования почвенных олиготрофных бактерий вдоль градиента высот в пустыне Чиуауа. J Засушливая среда. 2013;99:41–50. [Google Scholar]

58. Li J, Chen C, Zhao GZ, et al. Описание Dietzia lutea sp. ноябрь , выделенный из почвы пустыни в Египте. Сист Appl Microbiol. 2009; 32:118–123. [PubMed] [Google Scholar]

59. Powell JT, Chatziefthimiou AD, Banack SA, et al. Микроорганизмы коры пустыни, среда их обитания и здоровье человека. J Засушливая среда. 2015; 112:127–133. [Google Scholar]

60. Этемадифар З., Голами М., Дерикванд П. Устойчивые к УФ-излучению бактерии с устойчивостью к множественным стрессам, выделенные из пустынных районов Ирана. Geomicrobiol J. 2016;33:1–7. [Академия Google]

61. Гаррити ГМ, Белл Дж. А., Лилберн Т. Г. Руководство Бержи по систематической бактериологии. Спрингер; 2004. Таксономический очерк прокариот. [Google Scholar]

62. Rainey FA, ​​Klatte S, Kroppenstedt RM, et al. Dietzia , новый род, включающий Dietzia
Мари
гребень . ноя ., ранее Rhodococcus
Мари . Int J Syst Evol Microbiol. 1995; 45:32–36. [PubMed] [Google Scholar]

63. Кряжевских Н.А., Демкина Е.В., Лойко Н.Г., и соавт. Сравнение адаптационного потенциала Артробактерия
оксиданы и Acinetobacter
lwoffii изолятов из вечномерзлых осадочных пород и аналогичных коллекционных штаммов. Микробиология. 2013;82:29–42. [Google Scholar]

64. Ordoñez OF, Flores MR, Dib JR, et al. Коллекция культур экстремофилов из андских озер: экстремальная нетронутая среда, в которой обитает большое разнообразие микроорганизмов, устойчивых к ультрафиолетовому излучению. Микробная Экол. 2009; 58: 461–473. [PubMed] [Академия Google]

65. Paenibacilius B. Микробное разнообразие экстремальных регионов: невидимое наследие и богатство. Индийский J Plant Genet Resour. 2016;29:246–248. [Google Scholar]

66. Groth I, Schumann P, Weiss N, et al. Agrococcus jenensis род. ноябрь, сп. nov., новый род актиномицетов с диаминомасляной кислотой в клеточной стенке. Int J Syst Evol Microbiol. 1996; 46: 234–239. [PubMed] [Google Scholar]

67. Pirhadi M, Enayatizamir N, Motamedi H, et al. Влияние засоленности почвы на разнообразие и сообщество ростстимулирующих эндофитных растений сахарного тростника бактерий ( Сахар
лекарственный L. var. CP48) Appl Ecol Environ. 2018;16:725–739. [Google Scholar]

68. Сохансанж А., Кархане А.А., Джази Ф.Р. Идентификация и характеристика индуцируемого солью полипептида у Paenibacillus sp. , умеренно галофильная бактерия. J Biosci Bioeng. 2005; 100: 573–575. [PubMed] [Google Scholar]

69. Раддади Н., Джакомуччи Л., Мараско Р. и соавт. Бактериальные полиэкстремотолерантные биоэмульгаторы из засушливых почв улучшают водоудерживающую способность и поглощение влаги в песчаных почвах. Факт микробной клетки. 2018;17:83. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

70. Бойлен К.В. Выживание Arthrobacter
crystallopoietes во время длительных периодов сильной засухи. J Бактериол. 1973; 113: 33–37. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

71. Abou-Shanab RAI, Angle JS, van Berkum P. Устойчивые к хромату бактерии для усиленного поглощения металлов Eichhornia
crassipes (Mart.) Int J Phytorem. 2007; 9: 91–105. [PubMed] [Google Scholar]

72. Чепцов В.С., Воробьева Е.А., Манучарова Н.А., и соавт. 100 кГр гамма-пораженных микробных сообществ в древней арктической вечной мерзлоте в условиях, имитирующих марсианские. Экстремофилы. 2017;21:1057–1067. [PubMed] [Академия Google]

73. Osman S, Peeters Z, La Duc MT, et al. Влияние затенения на выживание бактерий в условиях, имитирующих марсианскую атмосферу и УФ-излучение. Приложение Environ Microb. 2008; 74: 959–970. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

74. Джесмин Т., Хок С. Устойчивость бактерий к хрому и кадмию в почвах с различным текстурным составом. Int J Curr Microbiol Appl Sci. 2016;5:369–379. [Google Scholar]

75. Нисимура Ю., Ино Т., Иидзука Х. Acinetobacter
радиорезистент
сп . ноя . выделены из хлопка и почвы. Int J Syst Evol Microbiol. 1988; 38: 209–211. [Google Scholar]

76. Singh N, Marwa N, Mishra J, et al. Бревундимонас
diminuta опосредованное снижение токсичности мышьяка и стимулирование роста растений в Oryza
sativa L. Ecotox Environ Safe. 2016; 125:25–34. [PubMed] [Google Scholar]

77. Dartnell LR, Hunter SJ, Lovell KV, et al. Стойкость к низкотемпературному ионизирующему излучению Дейнококк
radiodurans и антарктических бактерий Сухой долины. Астробиология. 2010; 10:717–732. [PubMed] [Google Scholar]

78. Li J, Long LJ, Yang LL, et al. Янибактер
алкалифилус зр. nov., выделен из коралла Anthogorgia
сп . Антон Леу. 2012; 102: 157–162. [PubMed] [Google Scholar]

79. Subramanian P, Kim K, Krishnamoorthy R, et al. Толерантность к холодовому стрессу у психротолерантных почвенных бактерий и устойчивость к холоду у томатов (9).0204 Соланум
lycopersicum Mill.) при низких температурах. ПЛОС Один. 2016;11:e0161592. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

80. Zhang YQ, Li WJ, Zhang KY, et al. Массилиа
твердая мозговая оболочка
сп . ноя ., Массилиа
альбидифлавовидный
сп . ноя ., Массилиа
складной
сп . ноя . и Массилиа
лютея
сп . ноя ., выделен из почв Китая. Int J Syst Evol Microbiol. 2006; 56: 459–463. [PubMed] [Google Scholar]

81. Zheng C, Qu B, Wang J, et al. Выделение и характеристика новой бактерии, разлагающей нитробензол, с высокой солеустойчивостью: Micrococcus
лютеус . Джей Хазард Матер. 2009; 165:1152–1158. [PubMed] [Google Scholar]

82. Maldonado J, Diestra E, Huang L, et al. Выделение и идентификация бактерии с высокой толерантностью к свинцу и меди из морского микробного мата в Испании. Энн Микробиол. 2010;60:113–120. [Академия Google]

83. Соина В.С., Воробьева Е.А. Роль клеточной дифференцировки в высокой устойчивости прокариот к длительному сохранению в вечной мерзлоте. Adv Space Res. 1996; 18:97–101. [Google Scholar]

84. LeBlanc JC, Goncalves ER, Mohn WW. Глобальная реакция почвы на стресс высыхания актиномицетов Rhodococcus
джостии RHA1. Приложение Environ Microb. 2008; 74: 2627–2636. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

85. Лубсанова Д.А., Зенова Г.М., Кожевин П.А., и соавт. Нитчатые актинобактерии засоленных почв аридных территорий. Известия Московского ун-та почвоведения. 2014;69: 88–92. [Google Scholar]

86. Blondelet-Rouault MH, Weiser J, Lebrihi A, et al. Кассеты гена устойчивости к антибиотикам, полученные из π-интерпозона, для использования в E. coli и Streptomyces . Ген. 1997; 190:315–317. [PubMed] [Google Scholar]

87. Mykytczuk NC, Wilhelm RC, Whyte LG. Planococcus halocryophilus sp. ноя ., экстремальный минусовой вид из высокогорной многолетней мерзлоты Арктики. Int J Syst Evol Microbiol. 2012;62:1937–1944. [PubMed] [Академия Google]

88. Li WJ, Zhang YQ, Schumann P, et al. Kocuria aegyptia sp. ноя ., новая актинобактерия, выделенная из засоленной, щелочной почвы пустыни в Египте. Int J Syst Evol Microbiol. 2006; 56: 733–737. [PubMed] [Google Scholar]

89. Subramanian S, Sam S, Jayaraman G. Восстановление шестивалентного хрома металлоустойчивыми и галотолерантными Planococcus
морской VITP21. Afr J Microbiol Res. 2012; 6: 7339–7349. [Академия Google]

90. Асгарани Э., Суди М.Р., Борзуи Ф. и др. Радиорезистентность у психротрофных Kocuria sp. ASB 107 выделен из радиоактивного источника Аб-э-Сиах. J Энвайрон Радиоактив. 2012; 113:171–176. [PubMed] [Google Scholar]

91. Rao S, Chan OW, Lacap-Bugler DC, et al. Устойчивые к радиации бактерии, выделенные из высокогорной почвы в Тибете. Индиан Дж Микробиол. 2016; 56: 508–512. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

92. Чепцов В.С., Воробьева Е.А., Белов А.А. Выживаемость микробных сообществ почвы и вечной мерзлоты после облучения ускоренными электронами в условиях, имитирующих Марс и открытый космос. Науки о Земле. 2018;8:298. [Google Scholar]

93. Morais PV, Francisco R, Branco R, et al. Leucobacter chromiireducens sp. nov и Leucobacter aridicollis sp. ноя гг., два новых вида выделены из среды, загрязненной хромом. Сист Appl Microbiol. 2004; 27: 646–652. [PubMed] [Google Scholar]

94. Janssen PH. Выявление доминирующих таксонов почвенных бактерий в библиотеках генов 16S рРНК и 16S рРНК. Приложение Environ Microb. 2006; 72: 1719–1728. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

95. Zhou J, Xia B, Huang H, et al. Микробное разнообразие и неоднородность песчаных подпочвенных слоев. Приложение Environ Microb. 2004; 70: 1723–1734. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

96. Horvath RS. Микробный ко-метаболизм и разложение органических соединений в природе. Bacteriol Rev. 1972; 36:146–155. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

97. Griffin DW. Атмосферное перемещение микроорганизмов в облаках пыли пустыни и последствия для здоровья человека. Clin Microbiol Rev. 2007; 20:459–477. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

98. Peter H, Hörtnagl P, Reche I, et al. Бактериальное разнообразие и состав во время дождей с сахарской пылью и без нее влияют на достижение высокогорного озера в Альпах. Environ Microbiol Rep. 2014; 6:618–624. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

99. Shirsalimian MS, Sepahy AA, Amoozegar MA, et al. Выделение мезофильного и галотолерантного штамма Kocuria
polaris из района Гандом Берьян в пустыне Лут в Иране, умеренно устойчив к гамма-излучению и высыханию. Биоски Биотех Рес Азия. 2016;13:2343–2350. [Академия Google]

100. Шеин Е.В. Курс физики почв. Москва: МГУ; 2005. [Книга в России] [Google Scholar]

101. Гуджал Ю., Замум М., Сабау Н. Новые и будущие разработки в микробной биотехнологии и биоинженерии. 2018. Эндофитные актинобактерии из местных растений алжирской Сахары: потенциальные агенты для биоконтроля и стимулирования роста растений; стр. 109–124. [Google Scholar]

102. Cooke RU. Солевое выветривание в пустынях. доц. геол. 1981; 92: 1–16. [Академия Google]

103. Crisler JD, Newville TM, Chen F, et al. Бактериальный рост при высоких концентрациях сульфата магния в марсианских почвах. Астробиология. 2012;12:98–106. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

104. Ollier CD. Инсоляционное выветривание; примеры из центральной Австралии. Am J Sci. 1963; 261: 376–381. [Google Scholar]

105. Cabiscol Català E, Tamarit Sumalla J, Ros Salvador J. Окислительный стресс у бактерий и повреждение белков активными формами кислорода. Интер микробиол. 2000;3:38. [PubMed] [Академия Google]

106. Шевцу А., Эль-Темсах Ю.С., Йонер Э.Дж. и соавт. Окислительный стресс, индуцированный у микроорганизмов наночастицами нульвалентного железа. Микробы Окружающая среда. 2011; 26: 271–281. [PubMed] [Google Scholar]

107. Chattopadhyay MK, Raghu G, Sharma YV, et al. Увеличение окислительного стресса при низкой температуре у антарктической бактерии. Карр микробиол. 2011; 62: 544–546. [PubMed] [Google Scholar]

108. Beblo-Vranesevic K, Galinski EA, Rachel R, et al. Влияние осмотического стресса на устойчивость к высыханию и облучению (гипер)термофильных микроорганизмов. Арка микробиол. 2017;199:17–28. [PubMed] [Google Scholar]

109. Rummel JD, Beaty DW, Jones MA, et al. Новый анализ «особых регионов» Марса: результаты второй группы научного анализа особых регионов MEPAG (SR-SAG2) Астробиология. 2014; 14:887–968. [PubMed] [Google Scholar]

110. Vaniman DT, Bish DL, Chipera SJ, et al. Соли сульфата магния и история воды на Марсе.